РАЗДЕЛ 7. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

 

 

МОДЕЛИРОВАНИЕ ОЖОГОВОЙ ТРАВМЫ

В ЭКСПЕРИМЕНТЕ НА ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ

А.Л.Адмакин, В.А.Максюта, В.С. Кутырин, А.В Филькова., Н.М.Чиликин

Военно-медицинская академия, кафедра термических поражений, г. Санкт-Петербург

Введение. Моделирование ожоговой травмы возможно лишь на живом организме, для чего используются практически любые лабораторные животные. Относительно мелкие животные, такие как крысы, имеют ряд преимуществ.

Короткий жизненный цикл и малые затраты на содержание крыс делают их достаточно удобной биологической моделью для эксперимента. За счет массовой доступности животных одного поколения возможен отбор больших групп с одинаковыми возрастными и метрическими данными. Это позволяет наносить ожоги с большей точностью относительно площади поверхности тела.

Но малый размер животных приводит к ряду сложностей, снижающих точность эксперимента. В число недостатков можно отнести тонкий кожный покров, на котором сложно отрегулировать глубину ожоговой травмы.

Кроме того на крысе сложнее, чем на крупных животных, формировать ожоговую рану большой площади с равномерной глубиной повреждения тканей.

Цель. Разработка методики, позволяющей формировать ожоги заданной глубины и площади на лабораторных животных с помощью оригинального аппарата для нанесения ожоговой травмы у животных в эксперименте.

Материалы и методы.

Предложенный аппарат для нанесения ожогов технически представляет собой электрический паяльник N=100 Вт с медной пластиной, закрепленной на рабочем стержне. Непосредственно к пластине крепится датчик мультиметра в положении «термопара». В электрическую цепь (U=220 В, w=50 Гц) на проводе питания включается переменный резистор, позволяющий плавно регулировать поступающее к паяльнику напряжение. Контроль нагрева пластины позволяет задавать необходимую температуру на рабочей поверхности. Под контролем времени экспозиции данным прибором возможно у разных животных формировать одинаковые по площади и глубине поражения ожоги.

Результаты. В опыте использовалась медная пластина с рабочей поверхностью круглой формы (D=1,5 см, что соответствует S=2,25 см²). При средней массе крысы 210±20 гр. площадь поверхности тела соответствует 200 см². Для расчета площади поверхности кожи крысы использовали формулу, предложенную M. Lee в 1929 г.(по Н.И. Кочетыгову, 1964): S = 12,54 × M ^0,66, где S – поверхность тела, см²; М – масса тела животного, г. Таким образом средняя площадь поверхности тела подопытных крыс составила 427±26 см². Соответственно ожог от однократной экспозиции нагретой пластины S=2,25 см² соответствовал 0,53% поверхности тела животного.

Подопытным животным проводилось общее обезболивание. На спине ножницами, а затем безопасной бритвой гладко выбривалась площадка равная планируемой площади ожога. Под кожу шпицем через прокол близлежащей интактной кожи, нагнетали воздух под место предполагаемого воздействия в количестве зависящим от площади ожога (20-80 мл). Воздух необходим для создания термобарьера, чтобы защитить глубжележащие ткани. После этого на подготовленную область наносились глубокие ожоги. Для создания ожогов на всю толщу кожного покрова с минимальным поражением подкожных структур эмпирическим путем была подобрана 10-ти секундная экспозиция медной пластины, нагретой до 250 С^о.

Заключение. Предложенный аппарат для нанесения программируемых ожогов вместе с описанной методикой позволяет проводить эксперименты на лабораторных животных в том числе при испытании различных лекарств и раневых покрытий.

 

 

ОПЫТ РАЗРАБОТКИ И ПРИМЕНЕНИЯ ПРОГРАММНОГО ОБЕСПЕЧЕНИЯ ДЛЯ АВТОМАТИЗАЦИИ РАСЧЕТА ПЛОЩАДИ ПОРАЖЕННОЙ ПОВЕРХНОСТИ У ДЕТЕЙ С ТЕРМИЧЕСКОЙ ТРАВМОЙ

А.М.Акименков ^[1], Д.Д.Долотова ^[2], Л.В.Шурова ^[1], Л.И.Будкевич ^[3], Б.А.Кобринский ^[1][2] И.Шмыр ^[2]

^[1] ФГБУ «Московский НИИ педиатрии и детской хирургии» Минздрава России, ^[2] ГБОУ ВПО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова», ^[3] ГБУЗ Детская городская клиническая больница №9 им. Г.Н. Сперанского, Москва

 

Ожоги относятся к одному из самых тяжелых видов травматических поражений, для которых характерна высокая летальность, достигающая по различным данным 10-15%. Среди причин смерти в детском возрасте ожоги занимают третье место. В определении тактики ведения ожоговых больных ключевое значение имеет расчет площади пораженной поверхности. С этой целью у взрослых применяется «правило девяток» и «правило ладони». Однако, «правило девяток» не всегда применимо у детей в связи с большим размером головы относительно туловища, чем у взрослых. Для оценки площади ожога у детей традиционно используется таблица Ланда и Браудера, учитывающая изменение пропорций ребенка с возрастом. В практическом применении удобно использовать графическое представление тела человека в двух проекциях, которое принято называть скицей. В настоящее время в России используется только плоскостное изображение человека (как в бумажном, так и электронном варианте), допускающее значительные погрешности в расчете суммарной площади пораженной поверхности в силу того, что не учитывается площадь боковых пораженных поверхностей.

На основании вышесказанного, целью настоящей работы являлось создание электронного варианта скицы, позволяющего, по возможности, учесть объемность человеческого тела. Разработанная программа для персонального компьютера «Электронная скица» позволяет отмечать врачу пораженные участки тела, а после внесения данных о пациенте (таких как возраст, пол, рост и масса) рассчитать площадь указанных участков. При вычислении доли пораженной поверхности используется модифицированная таблица Ланда и Браудера, что определяет возможность использования программы, как для детей, так и для взрослых пациентов. В расчетах с помощью системы коэффициентов учитывается площадь боковых поверхностей.

Для удобства расчета необходимого размера аутодермотрансплантатов для пластического закрытия ран на основе анализа формул, разработанных другими авторами, реализован подсчет площади ожога в квадратных сантиметрах. Кроме того, программный модуль позволяет вычислить площадь возможных донорских участков.

Программа «Электронная скица» предназначена для поддержки врачебных решений в комбустиологии. Ее применение позволит повысить точность вычисления площади ожоговой поверхности врачами с разным уровнем квалификации и опыта в данной области, что улучшит качество оказания медицинской помощи в лечении пациентов с термической травмой.

 

 

ИССЛЕДОВАНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРИМЕНЕНИЯ БИОПЛАСТИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА «ГИАМАТРИКС» ПРИ ОЖОГАХ IIIБ CТЕПЕНИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

И.Р.Гильмутдинова ² , Л.Т.Волова ¹, В.В.Болтовская ¹, И.Ф.Нефедова ¹

¹Институт экспериментальной медицины и биотехнологий, ГБОУ ВПО Самарский государственный медицинский университет Минздрава России, ²ООО «НПО ЛИОМАТРИКС», г. Самара, г.Оренбург.

 

Термические ожоги кожных покровов занимают ведущее место в структуре бытового и производственного травматизма. В РФ ежегодно регистрируется более 400 тысяч случаев ожогов, из них 30-35% составляют дети до 14 лет. В настоящее время отмечается прогрессивный рост локальных глубоких ожогов, при которых зона повреждения не превышает 10% поверхности тела. Одной из основных задач лечения пострадавших от ожогов на протяжении всей истории развития комбустиологии является своевременность и полнота восстановления кожных покровов, утраченных в результате ожоговой травмы. Используемые  в этой связи наиболее распространенные в России методы оказываются зачастую недостаточно эффективными.

В связи с вышеизложенным, разработка новых и совершенствование существующих методов лечения ожоговой раны является весьма актуальным.

Цель работы – провести исследование эффективности применения биопластического материала «Гиаматрикс» при ожогах 3Б степени в эксперименте.

Объект исследования — биопластический материал «Гиаматрикс» в виде эластичной тонкой пленки толщиной 0,3 мм, основа которой составлял полимер гиалуроновой кислоты.

Материал и методы исследования. Экспериментальное исследование биоматериала «Гиаматрикс» выполнено на 48 белых лабораторных крысах обоего пола. Крысам был произведен ожог 3Б степени площадью 6 % по разработанному нами способу. После воспроизведения термического ожога 3Б степени животные были разделены на 2 группы: опытную и контрольную (по 24 крысы в каждой). В опытной группе в первые пять минут была произведена первичная хирургическая обработка раны с наложением биопластического материала «Гиаматрикс». Контрольную группу составили животные со стандартным медикаментозным лечением ожоговой раны (рану до отторжения струпа обрабатывали многокомпонентным препаратом на водорастворимой основе «Левомеколь», а затем вели под повязкой с мецилурациловой мазью до заживления). Крыс выводили из эксперимента на 3, 14, 30, 45, 90 сутки после моделирования ожога. Во все указанные сроки забирали материал для гистологического исследования. Гистологические препараты  окрашивали гематоксилином и эозином, пикрофуксином по ван Гизон. Изучали и анализировали при помощи системы «ВидеоТесТ» с программным обеспечением  Морфология-5.2.

Результаты исследования и их обсуждение. Было отмечено, что кровотечение из ожоговой раны после хирургической обработки с последующим наложением биопластического материала «Гиаматрикс» быстро  останавливалось, в то время, как в контрольной группе оно было обильным и продолжительным. На 3 день эксперимента в опытной группе рана была сухой, отделяемого из-под струпа не отмечали. Струп представлял собой «Гиаматрикс» с элементами детрита. В контрольной группе рана была покрыта толстым жестким струпом буровато-коричневого цвета, спаянным с подлежащими тканями. Струп заходил за края раны. К 14 суткам отмечали значительное уменьшение размеров ожоговой раны. Струп сухой, при надавливании на него выделений  не отмечалось. В гистологических препаратах выраженный лейкоцитарный вал. Ближе к неповрежденному участку кожи рана была чистой, и начинались процессы краевой эпителизации. У животных контрольной группы струп был мягким на ощупь, при надавливании на него отмечалось появление серозно- желтой жидкости. На гистологических препаратах отмечали отек жировой клетчатки. Сосудистые петли мешкообразно расширены. В дерме визуализировали очаги кровоизлияний. К 45 суткам эксперимента в основной группе на месте термической раны был сформирован нежный на ощупь рубец, который не возвышался над поверхностью кожи. На микропрепаратах зона поражения полностью эпителизирована. На границе с ожоговой раной в дерме обнаруживается большое количество волосяных фолликулов и сальных желез.

У животных контрольной группы при гистологическом исследовании обращает внимание разное количество слоев эпидермиса в области поражения. Придатки кожи в рубце не регенерировали. Сам рубец представлял собой плотную соединительную ткань с преобладанием грубых пучков коллагеновых волокон, которые располагались хаотично.

По истечении 90 дней от начала эксперимента крысы основной группы ничем не отличались от здоровых особей. Место ожога заросло шерстью, обильно растущей с краев раны. На гистологических препаратах наблюдали восстановление сосочков дермы и формирование с краев очага поражения волосяных фолликулов и сальных желез. В контрольной группе крысы не прибавили в весе, шерсть была тусклой. При пальпации: рубец более грубый. Волосяной покров в области рубца и прилегающих участках кожи отсутствовал.

Выводы. Применение биодеградирующего биопластического материала «Гиаматрикс» приводит к снижению выраженной воспалительной реакции, по сравнению с применением мазевой терапии, оптимизирует процессы регенерации в ожоговой ране. В результате лечения формируется более нежный рубец, по сравнению с контрольной группой.

 

 

ГИСТОЛОГИЧЕСКАЯ СТРУКТУРА КОЖИ ПРИ ТЕРМИЧЕСКОМ ОЖОГЕ У КРЫСЯТ В УСЛОВИЯХ КОРРЕКЦИИ ВНУТРИВЕННЫМ ЛАЗЕРНЫМ ОБЛУЧЕНИЕМ КРОВИ И ЭМОКСИПИНОМ

А.В.Глуткин, В.И.Ковальчук, А.М.Чилимцев

Гродненский государственный медицинский университет, Гродно, Беларусь

Нами разработано специальное устройство для создания термического ожога кожи горячей жидкостью (вода) 99-100 °С экспозицией 10 сек в эксперименте (на крысятах), при котором у крысят на 3 сутки от момента развития ожога отмечается образования струпа с участками размягчения, а так же его отслоение со скоплением под ними серозно-гнойного экссудата, а при морфологическом анализе наблюдается коагуляционный некроз всех слоев кожи, но у края раны некроз захватывает только эпидермис и сетчатый слой дермы, а в центре раневой поверхности некротизированы все ткани до уровня поверхностных слоев подлежащих мышц. [Глуткин А.В. и др., 2012]. Установлено, что полное отторжение некротизированных тканей наблюдается между 7 и 14 сутками течения раневого процесса, а через 14 суток после травмы площадь раневой поверхности и скорость ее эпителизации зависят от наличия и выраженности гнойного воспаления в ране [Глуткин А.В. и др., 2012]. Представляется актуальным поиск новых путей коррекции данных нарушений в ожоговой ране. Одним из препаратов, обладающим выраженным антиоксидантным эффектом, является эмоксипин (2-этил-6-метил-3-оксипиридин гидрохлорид) [Дикова О.В., 2009, Миночкин П.И. и др., 2011]. Установлено, что данный препарат ограничивает повышение продуктов перекисного окисления липидов, и оказывает модулирующее действие на активность каталазы [Пашкевич И.В. и др., 2011], обладает мембраностабилизирующим эффектом [Мухамадияров Р.А. и др., 2012]. Одним из нефармокологических методов воздействия обладающий антиоксидантным эффектом, оказывающий положительное влияние на процессы микроциркуляции является внутривенное лазерное облучение крови (ВЛОК). Целью работы является оценка влияния эмоксипина, ВЛОК и их комбинации на морфологические изменения ожоговой раны у крысят 30 суточного возраста.

Экспериментальное исследование выполнено на беспородных белых крысятах самцах массой 55-65 г в возрасте 30 суток, n = 25. В условиях адекватного обезболивания тиопенталом натрия (50 мг/кг), введённого внутрибрюшинно, производили удаление в области спины крысы шерсти (выстригание с последующим выбриванием). Термический ожог кожи моделировали путём воздействия горячей жидкости (вода) температурой 99-100 °Сс помощью специально разработанного устройства в течение 10 сек. Площадь травмы составила около 8-9 % от всей поверхности тела. Все животные, у которых моделировался данный патологический процесс, были разделены на 4 основные группы: 1-ая — контрольная, в 2-ой выполняли ВЛОК, в 3-ей осуществляли введение эмоксипина, в 4-ой проводилось применение двух этих факторов. Для проведения ВЛОК процедуры использовали аппарат лазерной терапии «Люзар-МП» (Беларусь) и одноразовый стерильный световод с иглой, который вводили в одну из вен хвоста животного. Гемотерапию осуществляли при длине волны 0,67 мкм, мощностью излучения на конце световода 1,5–2,0 мВт. Время первого сеанса лазерного излучения составило 5 мин, последующие 4 сеанса — 6 мин. 1% раствор эмоксипина (РУП «Белмедпрепараты») в дозировке 2,5 мг/кг вводили внутрибрюшинно через 1 час после ожоговой травмы с последующим ежедневным введением (от 1 до 10 дней). Оценку глубины поражения тканей проводили на 14-ыесутки (количество животных в контрольной группе – 7, в группах с лечением – 6от момента получения термического ожога.Забирали полоску ткани размером 1,5 х 0,5 см, включающую центральную часть ожоговой раны и её край с прилежащей кожей, фиксировали в 10% нейтральном забуференном формалине, заключали в парафин, срезы которого окрашивали гематоксилином и эозином.

При введении препарата эмоксипинпо сравнению с контрольной группой снизилась доля животных с преобладанием гнойного воспаления в ране, а при его наличии снизилась его распространенность. Также отмечается усиление образования тонкостенных сосудов, обеспечивающих кровоснабжение поверхностных слоев грануляций. Чаще наблюдается преобладание гистиоцитарной инфильтрации молодой грануляционной ткани. При применении ВЛОК по сравнению с контрольной группой также снизилась доля животных с преобладанием гнойного воспаления в ране. У животных с отсутствием гнойного воспаления в ране состояние грануляционной ткани в целом сходное с таковым в контроле: отмечается умеренное развитие тонкостенных сосудов в молодой грануляционной ткани. Однако чаще наблюдается выраженная гистиоцитарная инфильтранция молодых грануляций. Анализ морфологический изменений у крысят с глубоким ожогом кожи спины заданной величины около 12 см² (8-9 % от общей площади животного) в условиях использования эмоксипина, ВЛОК и их комбинации выявил, уменьшение гнойного воспаления в ране и распространенности гнойного инфильтрата в ране, увеличение плотности новообразованных сосудов, обеспечивающих микроциркуляцию поверхностных слоев грануляций.

Полученные данные позволяют предположить, что применение данных факторов коррекции термической раны усиливает репаративные процессы, проявляющихся однотипными их проявлениями, и обладает не только локальным, но и системным действием реализуемые через антиоксидантные механизмы, что и следует оценить в следующем этапе исследований.

 

 

 

 

ДИНИТРОЗИЛЬНЫЕ КОМПЛЕКСЫ ЖЕЛЕЗА В КОРРЕКЦИИ ЭНЕРГИТИЧЕСКОГО МЕТАБОЛИЗМА ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ТЕРМИЧЕСКОЙ ТРАВМЕ

А.К.Мартусевич, А.Г.Соловьева, С.П.Перетягин, А.Ф. Ванин *

ФГБУ «ННИИТО» Минздрава России, *Институт химической физики им. Н.Н. Семенова РАН,  г.Н.Новгород, г.Москва

 

Цель исследования — оценка влияния ДНКЖ на состояние энергетического метаболизма эритроцитов при экспериментальной комбинированной термической травме.

Материал и методы. Исследование проводили на 30 половозрелых крысах-самцах линии Вистар, причем 10 из них были включены в интактную группу. Остальным животным наносили комбинированную травму по разработанной нами методике (Перетягин С.П. с соавт., 2011), включающей контактный термический ожог кожи спины (площадь – 20% п.т.) в сочетании с термоингаляционной травмой. Затем крыс разделяли на две равные по численности группы. Животным контрольной группы лечение осуществляли ежедневными внутрибрюшинными инфузиями физиологического раствора (1 мл), раны обрабатывали левомеколем. Крысы основной группы внутрибрюшинно получали ДНКЖ в физиологическом растворе (1:9 – суммарно 1 мл), местное лечение было аналогично проводимому в контрольной группе. Лечение животных обеих групп осуществляли в течение 10 дней. ДНКЖ синтезировали по методике А.Ф. Ванина (2005). Контрольными точками в исследовании были выбраны третьи и десятые сутки с момента нанесения комбинированной травмы. На третьи и десятые сутки выполняли забор крови у животных обеих групп из подъязычной вены. В образцах крови определяли активность ЛДГ в прямой (ЛДГпр) и обратной (ЛДГобр) реакциях по методу Г.А. Кочетова. Уровень лактата оценивали с помощью автоматического анализатора SuperGL Ambulance. Полученные данные были подвергнуты статистической обработке в программном пакете Statistica 6.0.

Результаты. Проведенные исследования позволили установить, что активность эритроцитарной ЛДГ в прямой и обратной реакциях при модельной термической травме существенно изменена относительно здоровых животных как на третьи, так и на десятые сутки послеожогового периода, причем превалирует нарастание активности ЛДГобр (р<0,05), тогда как ЛДГпр у животных данной группы умеренно снижена, причем на 3 сутки эта тенденция наиболее отчетливо выражена.

Системное применение ДНКЖ значительно модифицирует активность фермента как в прямой, так и в обратной реакциях. В частности, каталитические свойства эритроцитарной ЛДГпр у крыс данной группы на третьи сутки практически не отличаются от характерных для интактных животных, значительно превосходя уровень контрольной группы (р<0,05). На десятые сутки послеожогового периода у животных основной группы наблюдали выраженное нарастание активности энзима в прямой реакции, превышающее значения, выявленные как для здоровых животных, так и для особей контрольной группы в 2,02 и 2,24 раза соответственно (p<0,05 для обоих случаев). Этому заключению в полной мере способствует характер влияния изучаемого соединения на активность ЛДГ в обратной реакции: на третьи сутки она была лишь минимально повышена относительно уровня интактных животных (в 1,21 раза; p<0,05), оставаясь многократно ниже значений, зарегистрированных у животных контрольной группы (в 2,64 раза; p<0,05). Данная тенденция имела место и на десятые сутки послеожогового периода. В частности, при сочетании стандартной инфузионной терапии и местного лечения комбинированной термической травмы рассматриваемый показатель к данному сроку практически не изменяется по сравнению с выявленным на третьи сутки послеожогового периода (в 3,01 и 3,21 раза выше уровня, обнаруженного для интактных животных; p<0,05). В то же время при введении ДНКЖ на десятые сутки лечения указанный параметр лишь незначительно возрастает по отношению к первой точке наблюдения (на 32%; p<0,05), сохраняясь на умеренно повышенных значениях (в 1,61 раза выше нормы; p<0,05).

Установлено, что на третьи сутки после нанесения ожога у животных контрольной группы наблюдается существенное повышение концентрации лактата в эритроцитах относительно уровня интактных крыс (в 1,5 раза; p<0,05), сохраняющееся к завершению эксперимента (в 1,35 раза на десятые сутки; p<0,05). Данная динамика подтверждает формирующееся в результате тяжелой термической травмы смещение активности ЛДГ в сторону обратной реакции. Иная картина регистрируется у животных, получавших инъекции ДНКЖ. В первой контрольной точке у них выявляли умеренное, но значимое (на 12,3%; p<0,1) снижение эритроцитарного уровня лактата, которое может быть обусловлено его повышенным расходованием в прямой реакции ЛДГ, также увеличением проницаемости мембран эритроцитов. По нашему мнению, эта тенденция у крыс контрольной группы маскируется гиперактивацией ЛДГобр и, следовательно, усиленным синтезом лактата, многократно компенсирующим его потери, на фоне выраженного ингибирования прямой реакции фермента. По завершении эксперимента содержание лактата в эритроцитах крыс основной группы практически не отличается от физиологических значений, находясь на более низких цифрах (в 1,37 раза ниже; p<0,05), что указывает на отчетливую нормализацию рассматриваемого звена энергетического метаболизма крови к этому сроку.

Заключение. Результаты проведенных исследований указывают на позитивное действие ДНКЖ на энергетический метаболизм эритроцитов, которое преимущественно реализуется посредством регуляции каталитических свойств лактатдегидрогеназы.

 

 

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ОЦЕНКА ЛЕЧЕНИЯ РАН ДОНОРСКИХ УЧАСТКОВ В УСЛОВИЯХ ВЛАЖНОЙ СРЕДЫ И ВОЗДЕЙСТВИЯ ЭЛЕКТРИЧЕСКОГО ПОЛЯ, МОДУЛИРОВАННОГО ПО ЧАСТОТЕ

К.Ф.Османов, А.А. Жилин, Е.В.Зиновьев

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова, г.Санкт-Петербург.

 

Уровень ожогового травматизма в РФ достигает 384 на 100000 населения, т.е. до 1 млн.119 тыс. пострадавших в год —  шестое место в общей структуре травматизма.

Цель исследования — оценка эффективность одномоментного применения геля редкосшитых акриловых полимеров (карбополов), полимеров гиалуроновой кислоты на фоне воздействия электрического поля, модулированного по частоте, при лечении ран донорских участков у белых беспородных крыс-самцов.

Материалы и методы. Исследование выполнено на 60 белых беспородных крысах-самцах массой 150-200  г. в клинике экспериментальных животных № 2 Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова. В ходе их проведения соблюдены положения «Федерального руко­водства по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фарма­кологических веществ».

В качестве модели донорской раны использовать округлую плоскостную рану кожи (рационализат.предложение ВМЕдА). Животным наносились округлые кожные раны до фасции средней площадью 165±15 мм²  в области спины после предварительной обработки операционного поля 5% спиртовым раствором йода и местной анестезии  0,25% раствором  новокаина.

Все животные были разделены на 4 группы. В группах сравнения осуще­ствлялся анализ течения репаративных процессов при при­менении ранозаживляющих препаратов, которые  наносили на раны спустя 15-30 мин после их воспроизведения ран. В группах сравнения для лечения ран использовали – гели редкосшитых акриловых полимеров (карбополов) с фуллеренами С60, покрытия гиалуроновой кислоты (Джи-дерм), в т.ч на фоне применения частотно-модулированного сигнала прибора «МАГ» (ООО Рений-08, Санкт-Петербург) с частотой от 5 до 150 Гц. В контрольной группе раны обрабатывали мазью левомеколь («Нижфарм», Нижний Новгород), сульфадиазином серебра (Lek D.D., Словения), эбермином (центр ГИ, Куба).

Ранозаживляющие средства на раны наносили спустя 30 мин после образования донорских участков, впоследствии – на перевязках, выполняемых через два дня, вплоть до окончательного заживления ран. Для оценки их эффективности ежедневно проводили оценку внешнего вида ран, отмечали характер отделяемого, наличие и вид грануляций, фиксировали сроки отторжения струпа и заживления ран. Влияние лекарственных средств на заживление гнойных ран оценива­ли при помощи планиметрического метода Л.Н. Поповой с определением площади раны и расчетом индекса заживления.

Статистическая обработка клинико-экспериментальных данных проводилась с помощью программы Microsoft Excel пакета Microsoft Office для Windows. Техническое обеспечение – ПЭВМ типа Intel CORE i5. Расчеты клинико-экспериментальных данных были реализованы в формате электронных таблиц Excel (Windows7), которые обеспечивали статистическую обработку материалов.

Результаты и их анализ. Установлено, что наибольшая эффективность при лечении ран донорских участков у животных  констатирована в случаях местного применения гелей карбополов и покрытий гиалуроновой кислоты на фоне воздействия   частотно-модулированных сигнала, сократившими общий срок заживления донорских ран  на 20,8-22,1% (р<0,05). Использование многокомпонентной антибактериальной мази на гидрофильной основе (Левомеколь), а также мази сульфадиазина серебра с эпидермальным фактором роста (эбермин)  оказалось малоэффективным, т.к. ускоряло заживления ран  донорских участков у животных  лишь на 13-14% (p>0,05).

 

ТРОФИЧЕСКАЯ РАНА. МОДЕЛЬ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

К.Р. Хатмуллина

Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Башкирский государственный

медицинский университет» Минздрава России, г. Уфа

Имеющиеся в арсенале исследователей экспериментальные модели трофических язв и ран не учитывают полностью патогенез, связанный с гемической ишемией и гипоксией на тканевом уровне, а также нарушения микроциркуляции вследствие образования микротромбозов, сладж форменных элементов крови, экстравазации белка в перивазальное пространство с накоплением фибрина в тканях и образованием «фибриновых манжет» вокруг капилляров, что вызывает метаболические нарушения в тканях, препятствуя заживлению. Наличие локальной гипоксии тканей в области трофической раны активируются процессы свободнорадикального окисления и перекисного окисления липидов, приводящие к системному истощению с развитием цитокин опосредованного повреждения тканей. Кроме того, модели трофических ран не содержат в себе нарушений барьерной функции кожи, а повреждение ее слоев происходит посредством иссечения некоторой площади и глубины ткани.

Предложенным способом были смоделированы трофические раны на 12 экспериментальных животных (беспородных крысах). Во всех случаях был достигнут указанный технический результат.

Предложенный способ осуществляется следующим образом. Для полноценного моделирования трофической раны иссекают кожу до поверхностной фасции в виде круга  диаметром 20 мм, после чего по краям раны накладывают кисетный шов, а также кожно-фасциальные узловые швы, затем на поверхности дна образованной раны производят рассечение поверхностной фасции поперечными и продольными, взаимоперпендикулярными разрезами с образованием ячеек размерами 5х5мм. Использование способа повышает точность модели трофической раны за счет учета наличия локальной гипоксии и нарушения микроциркуляции.

Способ повышает достоверность модели за счет воспроизведения реальных характеристик патогенеза трофической раны на лабораторного животного. Способ проходит процедуру регистрации в ФГУ ФИПС.